Northern Blot原理及实验方法 

原理：在变性条件下将待检的RNA样品进行琼脂糖凝胶电泳，继而将在凝胶中的位置转移

到硝酸纤维素薄膜或尼龙膜上，固定后再与同位素或其它标记物标记的RNA探针进行反应。

用途：检测样品中是否含有基因的转录产物（mRNA）及其含量。  

实验方法： 

[仪器、试剂、材料] 

（一）仪器恒温水浴箱，电泳仪，凝胶成像系统，真空转移仪，真空泵，UV交联仪，杂交

炉，恒温摇床，脱色摇床，漩涡振荡器，分光光度计，微量移液器，电炉（或微波炉），离

心管，烧杯，量筒，三角瓶等。 

（二）材料总RNA样品或mRNA样品，探针模板DNA(25 ng)，尼龙膜 

（三）试剂：NorthernMax Kit（Cat. # 1940，Ambion, Inc.），琼脂糖，DEPC, X光底片，

底片暗盒，Random Primer， dNTP Mixture，111 TBq/mmol[a-32P]dCTP，Exo-free 

Klenow Fragment和10 X Buffer, Sephadex G-50,SDS，双氧水,灭菌水等。 

[方法与步骤] 

1.用具的准备： 

180度烤器皿：三角锥瓶、量筒、镊子、刀片等4小时。电泳槽：清洗梳子和电泳槽，并用

双氧水浸泡过夜，用DEPC水冲洗，干燥备用。处理DEPC水(2 L)备用。 

2．用 RNAZaP 去除用具表面的 RNase 酶污染用 RNAZap 擦洗梳子，电泳槽，刀片等，

然后用DEPC水冲洗二次，去除RNAZap。 

3．制胶：  

1． 称取0.36mg琼脂糖加入三角锥瓶中，加入32.4mlDEPC水后，微波炉加热至琼脂糖完

全熔解。60℃空气浴平衡溶液 (需加DEPC水补充蒸发的水分) 

 2． 在通风厨中加入3.6ml 的10＊Denaturing Gel buffer，轻轻振荡混匀。注意尽量避

免产生气泡。 

3． 将熔胶倒入制胶板中，插上梳子如果胶溶液上存在气泡，可以用热的玻璃棒或其它方

法去除，或将气泡推到胶的边缘。注：胶的厚度不能超过0.5cm。 

4．胶在室温下*凝固后，将胶转移到电泳槽中，加入1x MOPS Gel Running buffer盖

过胶面约1cm，小心拔出梳子。（配制250ml 1×MOPS Gel Running buffer，在电泳过

程中补充蒸发的buffer。） 

5．检查点样孔。 

4. RNA样品的制备 

在RNA样品中加入3倍体积的formaldehyde load dye和适当的EB（终浓度为10ug/ml）。

混匀后，65℃空气浴15min。短暂低速离心后，立即放置于冰上5min。 

5.电泳： 

1.将RNA样品小心加到点样孔中。 

2.在5V/cm 下跑胶（5ｘ14cm）。在电泳过程中，每隔30min 短暂停止电泳，取出胶，混

匀两极的电泳液后继续电泳。当胶中的溴纷蓝（500bp）接近胶的边缘时终止电泳。 

3.紫外灯下，检验电泳情况，并用尺子测量18S、28S、溴纷蓝到点样孔的距离。注意不要

让胶在紫外灯下曝光太长时间。 

6.转膜 

1．用3%双氧水浸泡真空转移仪后，用DEPC水冲洗。 

2．用RNAZap擦洗多孔渗水屏和塑胶屏，用DEPC水冲洗二次。 

3．连接真空泵和真空转移仪，剪取一块适当大小的膜（膜的四边缘应大于塑胶屏孔口的

5mm），膜在Transfer buffer浸湿5分钟后，放置在多孔渗水屏的适当位置。 

4．盖上塑胶屏，盖上外框，扣上锁。 

5．将胶的多余部分切除，切后的胶四边缘要能盖过塑胶屏孔，并至少盖过边缘约2mm，以

防止漏气。 

6．将胶小心放置在膜的上面，膜与胶之间不能有气泡。 

7．打开真空泵，使压强维持在50~58mbar；立即将transfer buffer加到胶面和四周。每

隔10min在胶面加上1ml transfer buffer，真空转移2小时。 

8．转膜后，用镊子夹住膜，于1x MOPS Gel Running buffer中轻轻泡洗10秒，去除残余

的胶和盐。 

9．用吸水纸吸取膜上多余的液体后，将膜置于UV交联仪中自动交联。 

10．将胶和紫外交联后的膜，在紫外灯下检测转移效率。(避免太长的紫外曝光时间) 

12．将膜在-20℃保存。 

7.探针的制备 

1．在1.5ml离心管中配制以下反应液：模板DNA(25 ng)    1ul 

Random Primer 2ul灭菌水 11ul总体积：14ul 

2．95°C加热3分钟后，迅速放置于冰冷却5min。 

3．在离心管中按下列顺序加入以下溶液： 

10×Buffer 2.5ul 

dNTP Mixture 2.5ul 

111 TBq/mmol[a-32P]dCTP 5 ul 

Exo-free Klenow Fragment 1 ul 

4．混匀后（25ul）， 37°C下反应30分钟。短暂离心，收集溶液到管底。 

5．65°C加热5min使酶失活。    

8.探针的纯化及比活性测定： 

1．准备凝胶：将1g凝胶加入30ml的DEPC水中，浸泡过夜。用DEPC水洗涤膨胀的凝胶

数次，以除去可溶解的葡聚糖。 

2．取1ml一次性注射器，去除内芯推扞，将注射器底部用硅化的玻璃纤维塞住，在注射器

中装填Sephadex G-50凝胶。 

3．将注射器放入一支15ml离心管中，注射器把手架在离心管口上。1600g离心4分钟，凝

胶压紧后，补加Sephadex G-50凝胶悬液，重复此步直至凝胶柱高度达注射器0.9ml刻度

处 

4．100ul STE缓冲液洗柱，1600g离心4min。重复3次。 

5．倒掉离心管中的溶液后，将一去盖的1.5ml离心管置于管中，再将装填了Sephadex G-50

凝胶的注射器插入离心管中，注射器口对准1.5ml离心管。 

6．将标记的DNA样品加入25 ul STE，取出0.5ul点样于DE8 paper上，其余上样于层

析柱上。 

7．1600g离心4min，DNA将流出被收集在去盖的离心管中，而未掺入DNA的dNTP则

保留在层析柱中。取0.5ul己纯化的探针点样于DE8-paper. 

 8． 测比活性。  

9．预杂交： 

1．将预杂交液在杂交炉中68℃预热，并漩涡使未溶解的物质溶解。 

2．加入适当的ULRAhyb到杂交管中(以100cm2膜面积加入10mlULRAhyb杂交液)，42℃

预杂交4 hr。 

10．探针变性： 

1．用10 mM EDTA将探针稀释10倍。 

2．90℃热处理稀释后探针10min后，立即放置于冰上5min。 

3．短暂离心，将溶液收集到管底。 

11．杂交： 

1．加入0.5ml ULTRAhyb到变性的探针中，混匀后，将探针加到预杂交液中。 

2．42℃杂交过夜（14~24hr）。杂交完后，将杂交液收集起来于－20℃保存。 

12．洗膜：  

1．低严紧性洗膜：加入Low Stringency Wash Solution#1 (100cm2膜面积加入20ml洗

膜溶液)，室温下，摇动洗膜5min两次。  

2．高严紧性洗膜： 加入High Stringency Wash Solution#2 (100cm2膜面积加入20ml

洗膜溶液)，42℃ 摇动洗膜20min两次。  

13．曝光： 

1． 将膜从洗膜液中取出，用保鲜膜包住，以防止膜干燥。 

2． 检查膜上放射性强度，估计曝光时间 

3． 将X光底片覆盖与膜上，曝光 

4． 冲洗X光底片，扫描记录结果。 

14．去除膜上的探针：将200ml 0.1%SDS（由DEPC 水配制）煮沸后，将膜放入，室温

下让SDS冷却到室温，取出膜，去除多余的液体，干燥后，可以保存几个月。 

15．杂交结果  

操作应该小心，但不必紧张。用于RNA电泳、转膜的所有器械、用具均须处理以除去RNAse

酶，以免样品的降解。转膜时，注意膜和多孔渗水屏之间不要有气泡